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伯豪生物官網(wǎng) www.dlqkx.org.cn 新官網(wǎng)消息 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序科研服務(wù)來(lái)了
1、SMART-seq
2012 年，由美國(guó)和瑞典的科學(xué)家共同開發(fā)了稱為 Smart-Seq（Switching mechanism at 5’end of the RNA transcript）的技術(shù) [1]。在 2013 年，Nature Methods 雜志上報(bào)告了新的方案，被稱為 Smart-Seq2[2]，隨后在 2014 年他們有公布了詳細(xì)的操作流程 [3]。獲取單細(xì)胞并裂解細(xì)胞后，含有 oligo-dT 的引物與 mRNA 的 poly- A 結(jié)合，逆轉(zhuǎn)錄酶 MMLV 進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄，逆轉(zhuǎn)錄酶到達(dá) mRNA 5’末端時(shí)，MMLV 的末端轉(zhuǎn)移酶活性會(huì)在一鏈 cDNA 的 3'末端增加額外的胞嘧啶，這時(shí) TSO 引物 3' 末端的 rGrG+ G 結(jié)合到首鏈末端的胞嘧啶，然后以首鏈 cDNA 為模版進(jìn)行延伸合成互補(bǔ)的第二鏈，全長(zhǎng) cDNA 經(jīng)過(guò) PCR 擴(kuò)增后進(jìn)一步進(jìn)行測(cè)序文庫(kù)的構(gòu)建。
▲SMART-seq2 技術(shù)原理
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1、起始量低：1 個(gè)細(xì)胞起始，適用于難以滿足 10X Genomics 等平臺(tái)起始細(xì)胞量要求的樣本。
2、覆蓋度高： 測(cè)序覆蓋 cDNA 的全長(zhǎng)序列，每個(gè)細(xì)胞能夠獲得上萬(wàn)個(gè)基因的表達(dá)。
3、信息個(gè)性化： 除了獲得基因表達(dá)信息，數(shù)據(jù)能夠用于可變剪接，cSNP 等分析，以及帶 poly- A 結(jié)構(gòu)的 lncRNA 研究。
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文庫(kù)結(jié)構(gòu)
圖 SMART-seq2 文庫(kù)示意圖
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建議測(cè)序深度及參數(shù)
指標(biāo) | 參數(shù) |
測(cè)序深度 | 6Gb/cell |
測(cè)序類型 | PE150 |
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1、類型：新鮮組織，原代細(xì)胞，細(xì)胞系等。
2、來(lái)源：血液提取、磁珠富集、流式富集、組織解離等。
3、樣本量：?jiǎn)蝹€(gè)細(xì)胞（或微量細(xì)胞）。
4、保存運(yùn)輸：細(xì)胞放入 SMART-seq 試劑盒指定的裂解液中，-80°C 保存，干冰運(yùn)輸。
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2、10X Genomics
10X Genomics 公司的 Chromium 系統(tǒng)利用 8 通道的微流體“雙十字”交叉系統(tǒng)，將含 barcode 的凝膠珠（Gel Beads）、細(xì)胞和酶的混合物、油三者混合，形成 GEMs（油包水的微體系）。GEMs 形成后，細(xì)胞裂解，凝膠珠自動(dòng)溶解釋放大量 barcode 序列，隨后 mRNA 逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生帶有 10X barcode 和 UMI 信息的 cDNA，構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)測(cè)序文庫(kù)，其中 10X barcode 用于區(qū)分細(xì)胞，UMI 用于區(qū)分 mRNA 分子。
圖 10X genomics 技術(shù)原理
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1、通量高： 一張芯片具有 8 個(gè)獨(dú)立的通道，可供 8 個(gè)樣本同時(shí)上機(jī)，每個(gè)通道可捕獲 10000 個(gè)細(xì)胞。
2、捕獲率高： 單細(xì)胞捕獲效率高達(dá) 65%，多細(xì)胞比例 <0.9%（1,000 個(gè)細(xì)胞中）。
3、延展性強(qiáng)： 除了獲得單細(xì)胞 mRNA 的信息，還提供了單細(xì)胞 TCR/BCR、單細(xì)胞表面蛋白、單細(xì)胞 ATAC 等多種解決方案。
文庫(kù)結(jié)構(gòu)
圖 10X Genomics 3’gene expression 文庫(kù)示意圖
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建議測(cè)序深度及參數(shù)
指標(biāo) | 參數(shù) |
測(cè)序深度 | 50,000~100,000 reads/cell |
測(cè)序類型 | PE150 |
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1、類型：新鮮組織，原代細(xì)胞，細(xì)胞系等。
2、來(lái)源：血液提取、磁珠富集、流式富集、組織解離等。
3、樣本量及其它質(zhì)控要求：
| 樣本類型 | 樣本質(zhì)控要求 |
| 細(xì)胞懸液 | >105 目標(biāo)細(xì)胞個(gè)數(shù)（底限 10,000 個(gè)細(xì)胞）； |
| 活率 >80%； | |
| 濃度 500-1,000 個(gè)細(xì)胞 /ul； | |
| 細(xì)胞間無(wú)粘連（成團(tuán)率 <5%）； | |
| 無(wú)大于 40μm 的細(xì)胞碎片或其他顆粒物； | |
| 不存在逆轉(zhuǎn)錄抑制劑和非細(xì)胞的核酸分子。 | |
| 血液 | EDTA 抗凝的全血（不可肝素抗凝），>5ml。 |
| 組織 | 0.3cm×0.3cm（不超過(guò) 0.5cm×0.5cm）的新鮮組織，4～5 塊。 |
4、保存運(yùn)輸：
（1）細(xì)胞懸液：建議現(xiàn)場(chǎng)制備，如要運(yùn)輸，建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞保護(hù)液，4°C 運(yùn)輸，48 小時(shí)內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室。
（2）血液：EDTA 抗凝的全血，4°C 運(yùn)輸，2 小時(shí)內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室；或提取 PBMC 后凍存，干冰運(yùn)輸。
（3）組織：建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞組織保護(hù)液，4°C 運(yùn)輸，48 小時(shí)內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室。
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3、BD Rhapsody
BD Rhapsody 技術(shù)利用卡式芯片在磁性的寡核苷酸條形碼標(biāo)記微球上實(shí)現(xiàn)單細(xì)胞捕獲和 mRNA 轉(zhuǎn)錄本的分子標(biāo)簽，然后將這些微球合并到單個(gè)管中用于 cDNA 擴(kuò)增和文庫(kù)構(gòu)建。可滿足 100~10000 個(gè)細(xì)胞的自動(dòng)分選、擴(kuò)增及建庫(kù)。
圖 BD Rhapsody 技術(shù)原理
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此外，該技術(shù)使用帶有寡核苷酸的高質(zhì)量抗體（Ab-oligos），這條寡核苷酸帶有抗體特異的條形碼，細(xì)胞在經(jīng)過(guò) Ab-oligos 標(biāo)記后，可在單細(xì)胞水平同時(shí)獲得轉(zhuǎn)錄組和蛋白表達(dá)。
圖 單細(xì)胞 mRNA 與蛋白同時(shí)測(cè)序
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| 高 效 | 每個(gè)樣本可測(cè) 100~10000 個(gè)細(xì)胞； |
| 2 天內(nèi)完成細(xì)胞懸液制備、單細(xì)胞捕獲、擴(kuò)增以及建庫(kù)。 | |
| 靈 活 | 抗體標(biāo)簽技術(shù)可實(shí)現(xiàn)多樣本混合捕獲； |
| 可選擇全轉(zhuǎn)錄組測(cè)序或目標(biāo)基因測(cè)序。 | |
| 可靠 | 利用成像系統(tǒng)對(duì)單細(xì)胞捕獲過(guò)程進(jìn)行質(zhì)控； |
| 單細(xì)胞捕獲效率高達(dá) 80%，多細(xì)胞比例 <1%（1,000 個(gè)細(xì)胞中）。 | |
| 整合 | 可同時(shí)檢測(cè)單個(gè)細(xì)胞的 mRNA 水平與蛋白水平。 |
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文庫(kù)結(jié)構(gòu)
圖 BD Rhapsody 基因表達(dá)文庫(kù)示意圖
建議測(cè)序深度及參數(shù)
指標(biāo) | 參數(shù) |
測(cè)序深度 | 50,000~100,000 reads/cell |
測(cè)序類型 | PE150 |
1、類型：新鮮組織，原代細(xì)胞，細(xì)胞系等。
2、來(lái)源：血液提取、磁珠富集、流式富集、組織解離等。
3、樣本量及其它質(zhì)控要求：
| 樣本類型 | 樣本質(zhì)控要求 |
| 細(xì)胞懸液 | > 10* 目標(biāo)細(xì)胞個(gè)數(shù)（底限 10,000 個(gè)細(xì)胞）； |
| 活率 >80%； | |
| 濃度 500-1,000 個(gè)細(xì)胞 /ul； | |
| 細(xì)胞間無(wú)粘連（成團(tuán)率 <5%）； | |
| 無(wú)大于 40um 的細(xì)胞碎片或其他顆粒物； | |
| 不存在逆轉(zhuǎn)錄抑制劑和非細(xì)胞的核酸分子。 | |
| 血液 | EDTA 抗凝的全血（不可肝素抗凝），>5ml。 |
| 組織 | 0.3cm×0.3cm（不超過(guò) 0.5cm×0.5cm）的新鮮組織，4~5 塊。 |
4、保存運(yùn)輸：
（1）細(xì)胞懸液：建議現(xiàn)場(chǎng)制備，如要運(yùn)輸，建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞保護(hù)液，4°C 運(yùn)輸，48 小時(shí)內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室。
（2）血液：EDTA 抗凝的全血，4°C 運(yùn)輸，2 小時(shí)內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室；或提取 PBMC 后凍存，干冰運(yùn)輸。
（3）組織：建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞組織保護(hù)液，4°C 運(yùn)輸，48 小時(shí)內(nèi)送達(dá)伯豪生物實(shí)驗(yàn)室。
圖 數(shù)據(jù)質(zhì)控及過(guò)濾
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圖 去除批次效應(yīng)
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圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序細(xì)胞亞群注釋
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圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序樣本間的細(xì)胞構(gòu)成差異
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圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序 Marker 基因分析
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圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序擬時(shí)序分析
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圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序擬時(shí)序 GO 注釋
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圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序擬時(shí)序分化轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控網(wǎng)絡(luò)
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圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序細(xì)胞亞群的功能富集分析
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圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序細(xì)胞亞群的功能富集在樣本間的差異
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圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序樣本間的功能差異分析
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圖 細(xì)胞通訊網(wǎng)絡(luò)
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1、胚胎發(fā)育
人類胚胎發(fā)育早期僅能收集微量的胚胎細(xì)胞和干細(xì)胞，這對(duì)于了解控制胚胎發(fā)育的基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)是一個(gè)難題，利用單細(xì)胞 RNA-Seq 技術(shù)對(duì)轉(zhuǎn)錄組進(jìn)行分析則克服了轉(zhuǎn)錄組分析對(duì)細(xì)胞數(shù)量要求的限制，近年來(lái)已有多篇相關(guān)報(bào)道。北京大學(xué)湯富酬教授課題組早在 2009 年就對(duì)單個(gè)小鼠卵裂球的進(jìn)行 RNA-Seq[4]，檢測(cè)到了比微陣列技術(shù)多 75%（5270）的表達(dá)基因，并且確定了 1753 個(gè)新的可變剪接位點(diǎn)。這種單細(xì)胞 mRNA- Seq 檢測(cè)將大大提高我們對(duì)單個(gè)細(xì)胞在哺乳動(dòng)物發(fā)展中轉(zhuǎn)錄復(fù)雜性的分析能力，尤其是胚胎發(fā)育早期和干細(xì)胞這類在體內(nèi)罕見的細(xì)胞群。2013 年，他們又對(duì) 90 個(gè)處于不同發(fā)育階段的人類早期胚胎細(xì)胞以及 34 個(gè)胚胎干細(xì)胞進(jìn)行了詳盡的分析 [5]，檢測(cè)出了 22,687 個(gè)母源表達(dá)基因，其中包括 8,701 條長(zhǎng)鏈非編碼 RNAs，相比于以往通過(guò) microarray 檢測(cè)出的 9,735 個(gè)母源基因數(shù)量大大增加。研究還發(fā)現(xiàn)了 2,733 條新的 lncRNAs，其中許多只在特定的發(fā)育階段表達(dá)。此外，實(shí)驗(yàn)還檢測(cè)到 1498 個(gè)基因在上胚層（Epiblast，EPI）和體外人類胚胎干細(xì)胞間存在差異表達(dá)，證實(shí)了 EPI 和 ESCs 具有顯著不同的轉(zhuǎn)錄組，有顯示差異性表達(dá)，從而解答了人類上胚層和體外干細(xì)胞之間的基因表達(dá)是否相同這一由來(lái)已久的問(wèn)題。
圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序應(yīng)用：早期胚胎的單細(xì)胞測(cè)序 [5]
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2、器官發(fā)育
發(fā)育是一個(gè)極其復(fù)雜的過(guò)程，器官發(fā)生涉及到多種細(xì)胞類型的協(xié)調(diào)作用，期間基因表達(dá)受到嚴(yán)密、精準(zhǔn)的調(diào)控，這一過(guò)程中的基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制仍然亟需深入研究。心臟是哺乳動(dòng)物在胚胎期先形成的功能器官之一。盡管已有對(duì)小鼠胚胎心臟發(fā)育的大量系統(tǒng)研究，但是人類與小鼠的心臟存在著很大差異。2019 年，湯富酬課題組和喬杰課題組合作，利用高精度單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)對(duì)人類胚胎 5 周至 25 周心臟的 4000 多個(gè)單細(xì)胞進(jìn)行了系統(tǒng)的分析 [6]。該研究系統(tǒng)鑒定了人類胚胎期心臟的主要細(xì)胞類型，包括心肌細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、瓣膜細(xì)胞、心外膜細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞以及各種免疫細(xì)胞（包括肥大細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、T 細(xì)胞和 B 細(xì)胞）。隨著心臟發(fā)育進(jìn)展，心房、心室中的心肌細(xì)胞比例顯著下降，成纖維細(xì)胞、巨噬細(xì)胞等非心肌細(xì)胞的比例逐漸上升，這說(shuō)明在發(fā)育過(guò)程中成纖維細(xì)胞等非心肌類型細(xì)胞對(duì)心臟發(fā)育的作用可能越來(lái)越重要。此外，還發(fā)現(xiàn)心肌細(xì)胞解剖位置特異性的基因表達(dá)特點(diǎn)，而這些特點(diǎn)在早至胚胎發(fā)育第 5 周時(shí)就已經(jīng)有明確顯現(xiàn)。此外，通過(guò)與已經(jīng)發(fā)表的小鼠心臟發(fā)育的單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)進(jìn)行系統(tǒng)比較，鑒定出一系列人類心臟發(fā)育過(guò)程中主要細(xì)胞類型特異表達(dá)的重要基因。該研究還發(fā)現(xiàn)人類與小鼠的心臟中心肌細(xì)胞是較為相似的細(xì)胞類型，而成纖維細(xì)胞等細(xì)胞類型的物種間差異較大，這為利用小鼠模型研究人類的心臟發(fā)育提供了參比標(biāo)準(zhǔn)。
圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序應(yīng)用：臟發(fā)育過(guò)程中主要細(xì)胞類型的時(shí)空特征 [6]
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3、干細(xì)胞分化
造血干細(xì)胞（HSC）具有長(zhǎng)期自我更新、分化成多種成熟血細(xì)胞的潛能。它起源于胚胎前體，包括生血內(nèi)皮細(xì)胞和造血干細(xì)胞前體（pre-HSCs）。2016 年，軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院劉兵課題組利用 pre-HSCs 特異性的表面標(biāo)志，分離出高純度的 pre-HSCs。并針對(duì) HSC 發(fā)育過(guò)程中具有代表性的 5 類細(xì)胞進(jìn)行單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序，繪制了 HSC 發(fā)育過(guò)程的轉(zhuǎn)錄組圖譜，揭示了 pre-HSC 在轉(zhuǎn)錄活性、基因表達(dá)、代謝狀態(tài)、信號(hào)通路和轉(zhuǎn)錄因子網(wǎng)絡(luò)等方面的特征 [7]。發(fā)現(xiàn)并揭示 mTOR 信號(hào)通路在特異性調(diào)控 HSC 發(fā)育中發(fā)揮了關(guān)鍵作用。此外，還發(fā)掘出 Pre-HSC 的 98 個(gè)特征基因。該研究為今后闡明 HSC 的體內(nèi)發(fā)育規(guī)律、發(fā)掘 HSC 的體外再生策略提供了可靠的理論依據(jù)和數(shù)據(jù)資源。基于以上單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)，課題組在 2019 年進(jìn)一步描繪出 HSC 發(fā)育全程的 lncRNA 動(dòng)態(tài)表達(dá)圖譜，并鑒定到在 HSC 發(fā)育過(guò)程中重要的功能性 lncRNA 分子 [8]。本研究通過(guò)生物信息學(xué)分析篩選獲得一組潛在的功能性 lncRNA，并通過(guò)體外功能實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn) 6 個(gè)可能在胚胎造血發(fā)育中發(fā)揮作用的 lncRNA。利用條件基因敲除研究策略，著重闡明了 lncRNA-H19 對(duì)于 AGM 區(qū) HSC 發(fā)生的重要作用。LncRNA-H19 的缺失使得重要造血轉(zhuǎn)錄因子（包括 Runx1 及 Spi1 等）的啟動(dòng)子區(qū)域高甲基化并下調(diào)其表達(dá)，以致血管內(nèi)皮細(xì)胞向 pre-HSC 的轉(zhuǎn)化阻滯。
圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序應(yīng)用：HSC 發(fā)育過(guò)程中的基因動(dòng)態(tài)圖譜 [7]
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4、神經(jīng)科學(xué)
神經(jīng)科學(xué)是單細(xì)胞測(cè)序的另一個(gè)應(yīng)用領(lǐng)域，哺乳動(dòng)物的大腦中有數(shù)十億個(gè)神經(jīng)元，每個(gè)神經(jīng)元可根據(jù)形態(tài)特征，電生理特性，分子標(biāo)記進(jìn)行歸類。在一群細(xì)胞中，單個(gè)神經(jīng)元特異性的信息就被稀釋了，少數(shù)細(xì)胞特異的基因表達(dá)則有可能無(wú)法檢測(cè)到。研究不同神經(jīng)元的表達(dá)模式能夠?yàn)槲覀兲峁└幕虮磉_(dá)圖譜、甚至表達(dá)調(diào)控網(wǎng)絡(luò)。而且，將單個(gè)神經(jīng)元的基因表達(dá)于神經(jīng)元的表型信息結(jié)合起來(lái)，還能幫助我們對(duì)神經(jīng)元進(jìn)行更加準(zhǔn)確和細(xì)致的分類。上海伯豪助力中國(guó)科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院神經(jīng)科學(xué)研究所張旭院士研究組，通過(guò)高覆蓋度的單細(xì)胞測(cè)序和以神經(jīng)元大小為參考的層次聚類，對(duì)小鼠背根神經(jīng)節(jié)初級(jí)感覺神經(jīng)元進(jìn)行了分類，又通過(guò)全細(xì)胞膜片鉗在體記錄結(jié)合單細(xì)胞 PCR 方法可檢測(cè)各類初級(jí)感覺神經(jīng)元對(duì)外周皮膚刺激的反應(yīng)。該工作通過(guò)高覆蓋的單細(xì)胞測(cè)序?qū)Τ跫?jí)感覺神經(jīng)元進(jìn)行了重新分類，并且建立了基因表達(dá)與在體功能的相互關(guān)系 [9]。
圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序應(yīng)用：神經(jīng)元單細(xì)胞測(cè)序及亞群分類 [9]
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5、腫瘤微環(huán)境
腫瘤細(xì)胞能夠采用不同策略，使人體的免疫系統(tǒng)受到抑制，不能正常殺傷腫瘤細(xì)胞，上述過(guò)程被稱為免疫逃逸。免疫治療通過(guò)激活人體自身的免疫系統(tǒng)，恢復(fù)機(jī)體正常的抗腫瘤免疫反應(yīng)，從而控制與清除腫瘤。其中抗程序性死亡蛋白 1（programmed death 1, PD-1）及其配體（PD-L1）抑制劑是目前研究較多，發(fā)展較快的一種免疫療法。在各種腫瘤中，接受 PD-1 /PD-L1 抑制劑單藥治療患者的客觀有效率也僅為 10-30%，大部分患者對(duì)免疫檢查抑制劑并不敏感。隨著研究的深入，人們逐漸了解到腫瘤微環(huán)境的復(fù)雜性和多樣性，以及它對(duì)免疫治療的重要影響。腫瘤微環(huán)境與腫瘤細(xì)胞相互作用，共同介導(dǎo)了腫瘤的免疫耐受，從而影響了免疫治療的效果?？鼓[瘤免疫應(yīng)答是由眾多免疫細(xì)胞和分子參與的復(fù)雜過(guò)程，受到機(jī)體復(fù)雜而精細(xì)的調(diào)控，這其中的機(jī)制仍有待進(jìn)一步研究。2017 年 6 月，北京大學(xué)張澤民課題組及其合作在 Cell 雜志發(fā)表了肝癌 T 細(xì)胞圖譜研究 [10]，研究總共獲得 5063 個(gè)單細(xì)胞的數(shù)據(jù)，總共聚類為 11 個(gè) T 細(xì)胞亞群，包括 5 個(gè) CD8+ T 細(xì)胞亞群和 6 個(gè) CD4+ T 細(xì)胞亞群。其中肝癌組織中侵潤(rùn) Tregs 細(xì)胞亞群（C8_CD4-CTLA4）和耗竭性 CD8 T 細(xì)胞亞群（C4_CD8-LAYN）顯著富集，并且在這兩類細(xì)胞中表達(dá)的 PDCD1 和 TIGIT 等，是免疫治療的靶點(diǎn)。在腫瘤侵潤(rùn)性 Tregs 中，共鑒定出 401 個(gè)特異表達(dá)基因，在耗竭性 CD8 T 細(xì)胞中，鑒定出 82 個(gè)特異表達(dá)基因，并且發(fā)現(xiàn)了新的耗竭 maker，如 LAYN，PHLDA1 和 SNAP47 等。值得注意的是，其中 22 個(gè)耗竭 marker 同時(shí)也在腫瘤侵潤(rùn)性 Tregs 細(xì)胞中高表達(dá)，例如 CTLA4 和 LAYN 等。并且利用 TCGA 的數(shù)據(jù)進(jìn)行生存分析，發(fā)現(xiàn) LAYN 的表達(dá)顯著降低生存期。本研究還在單細(xì)胞水平進(jìn)行了 TCR 測(cè)序和分析，結(jié)果發(fā)現(xiàn)，在腫瘤侵潤(rùn)的 exhausted T 細(xì)胞和 Tregs 細(xì)胞中，觀察到 TCRs 發(fā)生了重復(fù)使用。在腫瘤組織中含有相同 TCR 的 T 細(xì)胞比例較高，而在外周血和正常組織中比例較低，這說(shuō)明在腫瘤中的 exhausted T 細(xì)胞和 Tregs 細(xì)胞發(fā)生了克隆擴(kuò)增。并且相比于早期病人，晚期病人中 T 細(xì)胞的克隆擴(kuò)增更加明 顯。本研究為腫瘤免疫的圖譜勾畫做出了范式，也為今后其他腫瘤開展類似的研究及各類腫瘤免疫的發(fā)展提供基礎(chǔ)。
圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序應(yīng)用：肝癌患者的單細(xì)胞測(cè)序 [10]
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6、用藥指導(dǎo)
藥物誘發(fā)的超敏綜合癥（DiHS/DRESS）是一種致命的多器官炎癥性疾病，與皰疹病毒再激活和誘發(fā)的自身免疫性疾病相關(guān)。病理生理學(xué)仍然不清楚，臨床治療的選擇有限。2020 年 1 月發(fā)表在 Nature Medicine 上研究對(duì) DiHS/DRESS 患者的皮膚和血液進(jìn)行了 scRNA-seq 檢測(cè) [11]。皮膚活檢組織通過(guò)單細(xì)胞 RNAseq 發(fā)現(xiàn)，患者對(duì)比健康人差異表達(dá)基因數(shù)量較多的是淋巴細(xì)胞群體。分析皮膚活檢的淋巴細(xì)胞，發(fā)現(xiàn)患者淋巴細(xì)胞呈現(xiàn)不同的分群。患者淋巴細(xì)胞中高表達(dá)的代表性基因有 CCR10，JAK3，STAT1 等。
圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序應(yīng)用：患者皮膚活檢的淋巴細(xì)胞呈現(xiàn)不同的分群 [11]
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血液 PBMCs 細(xì)胞通過(guò)單細(xì)胞測(cè)序發(fā)現(xiàn)，患者對(duì)比健康人差異表達(dá)基因數(shù)量較多的是 CD4 和 CD8 陽(yáng)性的亞型細(xì)胞和增殖的細(xì)胞。比較血液 PBMCs 在患者和健康人中的細(xì)胞群體分布，發(fā)現(xiàn) CCR4 和 CCR10（免疫細(xì)胞皮膚歸巢趨化因子受體）高表達(dá)的 CD4 和 CD8 陽(yáng)性細(xì)胞在患者中顯著高于健康人。在患者的這個(gè)細(xì)胞群體中，表達(dá) JAK3，STAT1，IL2RG 等基因的細(xì)胞比例明 顯高于健康人。
圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序應(yīng)用：患者血液的 CD4 和 CD8 細(xì)胞呈現(xiàn)不同的分群 [11]
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給予患者 JAK 抑制劑（tofacitinib）和口服抗皰疹病毒抑制劑（valganciclovir）后，患者的癥狀得到了極大的臨床獲益。治療前后的血液 PBMCs 細(xì)胞再次經(jīng)過(guò)單細(xì)胞 RNAseq 檢測(cè)發(fā)現(xiàn)細(xì)胞群體分布明 顯分化。體外實(shí)驗(yàn)也證實(shí) JAK 抑制劑（tofacitinib）和抗病毒藥物（Ganciclovir 和 Artesunate）能夠有效抑制藥物（SMX-TMP）誘導(dǎo)的 T 細(xì)胞增殖。
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7、病毒感染
2020 年 1 月，整個(gè)中國(guó)因新型冠狀病毒 2019-nCov 得了一場(chǎng)“感冒”。疫情一開始，武漢病毒研究所石正麗團(tuán)隊(duì)就用實(shí)驗(yàn)證實(shí)了血管緊張素轉(zhuǎn)化酶 2（Angiotensin-converting enzyme 2，ACE2）是新型冠狀病毒感染人體的受體基因。2020 年 1 月 26 日，上海同濟(jì)大學(xué)醫(yī)學(xué)院左為研究團(tuán)隊(duì)在《bioRxiv》上發(fā)表了題為“Single-cell RNA expression profiling of ACE2, the putative receptor of Wuhan 2019-nCov”的文章 [12]。
該研究利用已有的數(shù)據(jù)庫(kù)，結(jié)合單細(xì)胞 RNA 測(cè)序技術(shù)中相關(guān)生信分析，對(duì) ACE2 在人肺內(nèi)單個(gè)細(xì)胞的表達(dá)情況進(jìn)行了分析，共涉及 8 個(gè)樣本，43134 個(gè)細(xì)胞。結(jié)果表明：ACE2 受體主要在一部分（1% 左右）II 型肺泡上皮細(xì)胞（AT2）中表達(dá)；同時(shí)發(fā)現(xiàn)這些 AT2 細(xì)胞除了表達(dá)病毒受體，還表達(dá)與病毒復(fù)制和傳播相關(guān)的基因，說(shuō)明其很可能是冠狀病毒的靶細(xì)胞。可見，單細(xì)胞測(cè)序技術(shù)不僅是科研的利器，同時(shí)還為破解疫情做了應(yīng)有的貢獻(xiàn)。
圖 單細(xì)胞 RNA 測(cè)序應(yīng)用：ACE2 和其它 marker 基因在細(xì)胞亞群中的表達(dá) [12]
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| 序號(hào) | 文件類型 | 查閱 |
| 1 | 【畫冊(cè)】單細(xì)胞全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄本測(cè)序解決方案 | 點(diǎn)擊查看 |
| 2 | 【畫冊(cè)】石蠟樣本（FFPE）單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序解決方案 | 點(diǎn)擊查看 |
| 3 | 【畫冊(cè)】單細(xì)胞測(cè)序解決方案 | 點(diǎn)擊查看 |
