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伯豪生物官網(wǎng) www.dlqkx.org.cn 單細(xì)胞 ATAC 測序技術(shù)服務(wù)來了!
單細(xì)胞 ATAC 測序(Aaasay for transposase Accessible Chromatin with high throughput sequencing at the single cell level)翻譯成中文是在單細(xì)胞水平上通過高通量測序技術(shù)來研究染色質(zhì)開放程度(也叫染色質(zhì)的可及性)。染色質(zhì)開放程度(染色質(zhì)的可及性),反映了染色質(zhì)的轉(zhuǎn)錄活性狀態(tài),是研究基因表達(dá)調(diào)控的重要方向,在表觀遺傳圖譜繪制、細(xì)胞分化和發(fā)育及各類疾病的發(fā)生發(fā)展研究中具有重要的作用。
對染色質(zhì)可及性的研究是伴隨著對染色體結(jié)構(gòu)研究的發(fā)展逐漸興起的。1971 年,Mirsky 首先使用 DNase 來研究染色質(zhì)的結(jié)構(gòu),發(fā)現(xiàn) DNase 對于存在與染色中的 DNA 仍然可以切割,表現(xiàn)出染色中的 DNA 對于 DNase 的可及性。1975 年,Burkholder 和 Weaver 研究發(fā)現(xiàn) DNase I 對舒展?fàn)顟B(tài)的染色質(zhì)的消化速率高于對壓縮狀態(tài)的染色質(zhì)。同時指出 DNA 與染色質(zhì)蛋白的結(jié)合程度的差異與這兩種狀態(tài)下染色質(zhì)片段的功能相關(guān)。目前人們已經(jīng)知道雙螺旋的 DNA 與組蛋白結(jié)合后,會以染色質(zhì)或染色體的形式形成高級空間結(jié)構(gòu)。以人的基因組為例,每個組蛋白八聚體上纏繞有 146 個堿基對的 DNA。連接核小體與核小體之間的 DNA 序列稱為連接序列?;罴?xì)胞中染色質(zhì)的結(jié)構(gòu)總是處在動態(tài)變化中,在不同類型的細(xì)胞中,或在不同的生理條件和外界刺激下,細(xì)胞核中染色中呈現(xiàn)不同的結(jié)構(gòu)和狀態(tài)。這些結(jié)構(gòu)和動態(tài)變化的狀態(tài)表現(xiàn)形式之一就是染色質(zhì)可及性的變化。
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2015 年 4 月,Science 發(fā)表了 Multiplex single-cell profiling of chromatin accessibility by combinatorial cellular indexing [1] 的文章。同年 7 月,Nature 發(fā)表了 Single-cell chromatin accessibility reveals principles of regulatory variation [2] 的文章。這兩篇論文先后提出利用單細(xì)胞 ATAC-seq 技術(shù)對染色質(zhì)可及性進(jìn)行檢測,探索細(xì)胞轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制,解決了以往存在的細(xì)胞異質(zhì)性難題,成為 ATAC-seq 技術(shù)的一大突破。其中,后者將 ATAC-seq 與 Fluidigm C1 單細(xì)胞平臺整合,利用微流控芯片完成捕獲、裂解、轉(zhuǎn)座、PCR 等實驗過程,建立了自動化的單細(xì)胞染色質(zhì)可及性圖譜研究方法。
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圖 ATAC-seq 與 Fluidigm C1 單細(xì)胞平臺整合的實驗流程 [2]
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作者首先對 254 個類淋巴母細(xì)胞進(jìn)行了單細(xì)胞 ATAC 測序,將這些單細(xì)胞數(shù)據(jù)合并分析后得到的結(jié)果與群體細(xì)胞 DNase-seq 或 ATAC-seq 獲得的染色質(zhì)可及性圖譜具有很高的相關(guān)性,單細(xì)胞水平的數(shù)據(jù)再現(xiàn)了一些群體細(xì)胞 ATAC-seq 數(shù)據(jù)反映出的染色質(zhì)特征。
圖 單細(xì)胞 ATAC-seq 與常規(guī) ATAC-seq 的一致性 [2]
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為了進(jìn)一步驗證方法的可靠性,作者又用 scATAC-seq 的方法對 ENCODE 細(xì)胞系,包括 H1 人類胚胎干細(xì)胞、K562 慢性粒細(xì)胞性白血病細(xì)胞、GM12878 類淋巴母細(xì)胞、V6.5 小鼠胚胎干細(xì)胞、EML1 細(xì)胞(小鼠造血祖細(xì)胞)、TF- 1 細(xì)胞(人類成紅細(xì)胞)、HL-60 cells(人類 ?promyeloblasts)和 BJ 成纖維細(xì)胞 HL-60 細(xì)胞進(jìn)行了分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn)在增殖細(xì)胞中,復(fù)制時序結(jié)構(gòu)域(replication timing domains)的染色質(zhì)可及性的變異性增加。同時,作者還發(fā)現(xiàn)不同的轉(zhuǎn)錄因子可以通過協(xié)同或者競爭性結(jié)合的作用促進(jìn)或者抑制染色質(zhì)可及性的可變性。通過此方法對作者對大量轉(zhuǎn)錄因子的 ChIP-seq 數(shù)據(jù)研究繪制出了轉(zhuǎn)錄因子協(xié)同作用改變?nèi)旧|(zhì)可接近性的圖譜。此外,還發(fā)現(xiàn)與高可變性相關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子的是細(xì)胞類型特異的,在單細(xì)胞中染色質(zhì)狀態(tài)與組蛋白修飾也與染色質(zhì)可接近性變化相關(guān)。
圖 轉(zhuǎn)錄因子通過協(xié)同或者競爭性結(jié)合作用促進(jìn)或者抑制染色質(zhì)可及性的可變性 [2]
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2018 年 10 月,10X Genomics 推出的 Chromium 單細(xì)胞 ATAC 解決方案提供了一種全面的、可擴(kuò)展的方法來研究分析單個樣本中成百上千個細(xì)胞中染色質(zhì)的開放情況。通過轉(zhuǎn)座酶對混合的細(xì)胞核懸液進(jìn)行核 DNA 的切割,然后使用微流控芯片將溶液中的細(xì)胞核包裹到油滴中,形成納米級的凝膠珠狀乳狀液(GEMs)。采用 10X 條形碼,對每個細(xì)胞核切割的 DNA 加上條形碼。通過文庫構(gòu)建,測序,根據(jù) 10X 條形碼將測序得到的序列關(guān)聯(lián)到每個單獨的細(xì)胞核上。
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1、轉(zhuǎn)座酶切割核 DNA
細(xì)胞核懸浮液在包括轉(zhuǎn)座酶的混合液中孵育。轉(zhuǎn)座酶進(jìn)入細(xì)胞核,優(yōu)先在染色質(zhì)的開放區(qū)域?qū)?DNA 片段化。同時,將測序接頭序列添加到片段化的 DNA 片段的末端。
圖 轉(zhuǎn)座酶切割 DNA 示意圖
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2、GEM 生成及 Barcode 添加
在 Chromium Next GEM Chip H 芯片上,使包含有 barcode 的凝膠珠,轉(zhuǎn)座酶切割后的細(xì)胞核,混合液(包括 ATAC buffer 和 ATAC 酶),以及油滴進(jìn)行混合,生成 GEMs。為了達(dá)到每個油滴中包含有單個細(xì)胞核,需要對細(xì)胞核進(jìn)行有限稀釋,保證生成的大多數(shù) GEMs(~90-99%) 不包含細(xì)胞核,而其余的為包含單個細(xì)胞核 GEMs。
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GEMs 生成后,凝膠珠會溶解釋放出含有(i) Illumina P5 序列、(ii) 16nt 10X 條形碼序列和(iii) Read 1 (Read 1N) 序列的寡核苷酸。這些核苷酸序列會于片段化的 DNA,以及混合液進(jìn)行混合。后續(xù)經(jīng)過熱循環(huán)后生成含有 10X barcode 的單鏈 DNA。經(jīng)過孵育后,對 GEMs 進(jìn)行破油處理,所有 GEMs 中的含有 10X barcode 的單鏈 DNA 混合在一起,并進(jìn)行回收。
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3、破油后的純化
使用硅烷磁珠清除破油反應(yīng)混合物中殘留的生化試劑。固相可逆固定(SPRI) 珠子用于從樣本中消除未使用的 10X 條形碼。
4、測序文庫的構(gòu)建及質(zhì)檢
通過 PCR 將 P7 接頭以及樣本的標(biāo)簽(Index N)添加到文庫的兩端,形成包含有 P5 和 P7 接頭序列的文庫,用于 Illumina 橋式 PCR 擴(kuò)增。
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文庫結(jié)構(gòu)
圖 ?ATAC 文庫組成示意圖
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通過 Agilent TapeStation High Sensitivity D1000 ScreenTape 對文庫進(jìn)行質(zhì)檢,結(jié)果如下:
圖 Agilent TapeStation High Sensitivity D1000 ScreenTape 文庫質(zhì)檢結(jié)果
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或者用 ?Agilent Bioanalyzer High Sensitivity DNA chip 來檢測片段大小,結(jié)果如下:
圖 Agilent Bioanalyzer High Sensitivity DNA chip 質(zhì)檢結(jié)果
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備注:
a、橫坐標(biāo)表示文庫的片段程度,其中 0 代表核小體 free 的峰。1 代表包含有一個核小體的峰;2 代表包含有 2 個核小體的峰;以此類推。
b、核小體是由 DNA 和組蛋白形成的染色質(zhì)基本結(jié)構(gòu)單位。每個核小體由 146bp 的 DNA 纏繞組蛋白八聚體 1.75 圈形成。核小體核心顆粒之間通過 50bp 左右的連接 DNA 相連。加上兩端的 P5,P7 接頭,barcode,sample index,R1N 序列,長度大概如下:核小體 free 的峰長度 200 多 bp;1 個核小體的峰約為 300 多 bp;2 個核小體的峰約為 500bp,以此類推。
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建議測序深度及參數(shù)
指標(biāo) |
參數(shù) |
測序深度 |
每個細(xì)胞核測 25000 read pairs |
測序類型 |
PE150,dual-index(雙 index 測序) |
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▲流程精簡時效快: 可檢測單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄調(diào)控區(qū)域中的開放性染色質(zhì)。
▲通量高: 每個通道 500-10000 個細(xì)胞核。
▲效率高: 細(xì)胞核捕獲率高達(dá) 65%。
▲適用范圍廣: 經(jīng)驗證適用于原代細(xì)胞,凍存細(xì)胞,新鮮組織等。
▲信息分析: 獲取信息量大,可精細(xì)化分析。
▲同一份樣本可實現(xiàn)單細(xì)胞 ATAC、mRNA、TCR/BCR 同時測序,并整合數(shù)據(jù)。
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▲類型: 新鮮組織,原代細(xì)胞,細(xì)胞系等。
▲來源: 血液提取、磁珠富集、流式富集、組織解離等。
▲樣本量及其它質(zhì)控要求:
樣本類型 | 樣本質(zhì)控要求 |
細(xì)胞懸液 | >1x105? 個細(xì)胞; |
活率 >80%; | |
濃度 500~1,000 個細(xì)胞 /ul; | |
細(xì)胞間無粘連(成團(tuán)率 <5%); | |
無大于 40um 的細(xì)胞碎片或其他顆粒物; | |
不存在逆轉(zhuǎn)錄抑制劑和非細(xì)胞的核酸分子。 | |
血液 | EDTA 抗凝的全血(不可肝素抗凝),>5ml。 |
組織 | 0.3cm×0.3cm(不超過 0.5cm×0.5cm)的新鮮組織,4~5 塊。 |
▲樣本的保存與運輸:
(1)細(xì)胞懸液:建議現(xiàn)場制備,如要運輸,建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞保護(hù)液,4°C 運輸,48 小時內(nèi)送達(dá)伯豪生物實驗室。
(2)血液:EDTA 抗凝的全血,4°C 運輸,2 小時內(nèi)送達(dá)伯豪生物實驗室;或提取 PBMC 后凍存,干冰運輸。
(3)組織:建議使用伯豪生物自主研發(fā)的單細(xì)胞 ATAC-seq 組織保護(hù)液,4°C 運輸,48 小時內(nèi)送達(dá)伯豪生物實驗室。
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▲干細(xì)胞 / 發(fā)育生物學(xué)
▲腫瘤學(xué)
▲免疫學(xué)
▲神經(jīng)科學(xué)
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1、The Cell Ranger ATAC 分析結(jié)果
10X genomics 官方的 Cell Ranger ATAC 流程會輸出一個 HTML 文件,其中包含數(shù)據(jù)統(tǒng)計結(jié)果和初步的分析結(jié)果。
a、基本數(shù)據(jù)統(tǒng)計(細(xì)胞數(shù),每個細(xì)胞測到的數(shù)據(jù)的中位值,比對到 peaks 上的數(shù)據(jù)的比例等)
圖 ? 單細(xì)胞 ATAC 基本數(shù)據(jù)展示
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b、插入片段長度統(tǒng)計(包括核小體 free 的比例,單核小體的比例)
圖 插入片段長度統(tǒng)計(單細(xì)胞 ATAC 測序數(shù)據(jù)分析)
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c、細(xì)胞聚類結(jié)果
圖 細(xì)胞聚類結(jié)果(單細(xì)胞 ATAC 測序數(shù)據(jù)分析)
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2、Loupe Cell Browser 展示結(jié)果
Loupe Cell Browser 是一個適用于 Windows 和 MacOS 的桌面應(yīng)用程序,它可以快速、輕松地可視化和分析 10X Chromium 單細(xì)胞 ATAC 數(shù)據(jù)。它在尋找顯著的峰和識別轉(zhuǎn)錄因子基序、識別細(xì)胞類型、比較各組細(xì)胞之間的染色質(zhì)可及性以及探索細(xì)胞簇內(nèi)的子結(jié)構(gòu)方面進(jìn)行了優(yōu)化。
圖 Loupe Cell Browser 展示細(xì)胞分群及 peaks
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基于 RNA 的細(xì)胞注釋結(jié)果,對 ATAC 的細(xì)胞類型進(jìn)行打分注釋。
圖 單細(xì)胞 ATAC 測序細(xì)胞類群注釋結(jié)果
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1、干細(xì)胞分化
造血分化是從造血干細(xì)胞分化為具有不同功能的細(xì)胞過程。造血分化過程是一個復(fù)雜、多階段的,受多種因子調(diào)控的過程,單細(xì)胞組學(xué)技術(shù)有助于解析造血干細(xì)胞轉(zhuǎn)錄和細(xì)胞命運異質(zhì)性的順式和反式調(diào)節(jié)機(jī)制。2018 年,斯坦福大學(xué)的研究團(tuán)隊從健康人捐贈的骨髓中分選單個細(xì)胞進(jìn)行 scATAC-seq[3],獲得了造血系統(tǒng) 10 個細(xì)胞類型的染色質(zhì)可及性圖譜,構(gòu)建了人類造血染色質(zhì)可及性景觀圖來表征分化軌跡。作者利用 ChromVAR 鑒定不同細(xì)胞的 TF motif,發(fā)現(xiàn)了造血分化中主要的調(diào)控因子 GATA1, BATF, CEBPB 等。采用多種聚類方法對數(shù)據(jù)進(jìn)行降維聚類分析,觀察到髓系共同祖細(xì)胞(commonmyeloid progenitors,CMP) 和粒細(xì) - 巨噬細(xì)胞祖細(xì)胞(granulocyte-macrophage progenitors,GMPs) 的異質(zhì)性,并繪制了各個譜系細(xì)胞分化連續(xù)軌跡。此外本研究整合了 scATAC-seq 和 ?scRNAseq 數(shù)據(jù),將髓系分化基因的動態(tài)表達(dá)映射到染色質(zhì)的動態(tài)變化,并且發(fā)現(xiàn)了已知的髓系分化調(diào)節(jié)因子的表達(dá)模式。將轉(zhuǎn)錄因子表達(dá)與轉(zhuǎn)錄因子 motif 對比,共發(fā)現(xiàn)了 14,005 個順式調(diào)控元件,這些調(diào)控元件隨著染色質(zhì)開放狀態(tài)的變化也呈現(xiàn)顯著的異質(zhì)性??偟膩碚f,這項工作為在單細(xì)胞分辨率下對人類原代組織復(fù)雜的調(diào)節(jié)動力學(xué)進(jìn)行綜合研究提供了一個框架。
圖 聯(lián)合 scATAC-seq 與 scRNA-seq 研究造血分化 [3]
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2、腫瘤異質(zhì)性
乳腺癌具有高度異質(zhì)性,至少可分為六種不同的固有亞型,即 luminal A、luminal B、HER2-enriched、basal-like、normal breast 和 ?claudin-low。乳腺癌起源于乳腺上皮,人類和小鼠中的乳腺上皮,由兩個主要的細(xì)胞分層構(gòu)成導(dǎo)管上皮網(wǎng)絡(luò),分別是內(nèi)層管腔細(xì)胞和外層基底 / 肌上皮細(xì)胞。一系列的研究表明,在小鼠的這兩個細(xì)胞層中存在進(jìn)一步的異質(zhì)性。本研究應(yīng)用單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序(scRNA-seq)和單細(xì)胞染色質(zhì)可及性測序(scATAC-seq)對分離的乳腺上皮細(xì)胞(mammary epithelial cell,MECs)進(jìn)行分析 [4],重建了小鼠 MEC 系統(tǒng)的細(xì)胞類型及其潛在的基因調(diào)控特征。并且在管腔細(xì)胞的分泌類型中定義了新的分化狀態(tài),將管腔細(xì)胞分為祖細(xì)胞和成熟分泌細(xì)胞簇。通過整合 scRNA-seq 和 ATAC-seq,確定了在特定上皮細(xì)胞類型以及新定義的管腔分化狀態(tài)中差異激活的 cis 和 trans 調(diào)節(jié)元件。這項工作提供了一個重要資源來揭示與 MEC 身份和分化相關(guān)的調(diào)節(jié)元件,這將為確定乳腺癌中染色質(zhì)可及性的變化提供有價值的參考。
圖 ?scATAC-seq 與 scRNA-seq 整合分析 [4]
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3、免疫學(xué)
近期美國斯坦福大學(xué)的研究團(tuán)隊利用 10x Genomics 單細(xì)胞 ATAC-seq 技術(shù),繪制了來自血液、基底細(xì)胞癌組織的 200,000 多個單細(xì)胞的染色質(zhì)可及性圖譜 [5]。文章對來源于 16 個健康人外周血及骨髓細(xì)胞的 63,882 個細(xì)胞核樣本進(jìn)行單細(xì)胞 ATAC 測序分析,基于染色質(zhì)開放程度,鑒定出 31 個細(xì)胞亞群,并深入探索了免疫細(xì)胞譜系的調(diào)控軌跡。此外,研究團(tuán)隊還對 PD- 1 治療前后采集的基底細(xì)胞癌患者的原發(fā)性腫瘤樣本進(jìn)行了檢測,通過分析 37,818 個細(xì)胞的 ATAC-seq 數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)來源于不同患者的基質(zhì)細(xì)胞、免疫細(xì)胞基本聚到一起,而腫瘤細(xì)胞的分群則表現(xiàn)出顯著的異質(zhì)性。在 PD- 1 免疫治療后,對治療有相應(yīng)的患者中出現(xiàn)兩種 T 細(xì)胞亞群(耗竭性 CD8+ T 細(xì)胞和 CD4+ 濾泡輔助 T 細(xì)胞)的擴(kuò)張,且比例相當(dāng),暗示這兩種細(xì)胞類型在 PD- 1 阻斷后,其分化過程可能處于一致的調(diào)控模式。
圖 腫瘤細(xì)胞的的異質(zhì)性及 PD- 1 治療前后細(xì)胞亞群的改變 [5]
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4、神經(jīng)科學(xué)
利用單細(xì)胞 ATAC-seq 技術(shù)對成年雄性小鼠 13 個組織的單細(xì)胞染色質(zhì)可及性進(jìn)行了分析 [6]。結(jié)果共鑒定出 85 個亞群和 40 萬種調(diào)控元件。將單細(xì)胞染色質(zhì)可及性與單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組比較分析,發(fā)現(xiàn)兩種方法注釋的細(xì)胞類型表現(xiàn)出高度一致性。為了研究神經(jīng)元細(xì)胞中染色質(zhì)可及性的異質(zhì)性,對前額葉皮質(zhì)細(xì)胞的數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn),興奮性神經(jīng)元和中間神經(jīng)元明顯地與神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞、小膠質(zhì)細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞分離。并且在興奮性神經(jīng)元內(nèi)仍存在顯著的異質(zhì)性,可能反映了前額葉皮質(zhì)不同層中的表達(dá)和甲基化差異。
圖 前額葉皮質(zhì)細(xì)胞中染色質(zhì)可及性的異質(zhì)性 [6]
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